王秀颖 121007002 口腔学院
生物分子的分离纯化
聚合酶链反应
一、名解
生物大分子:主要包括核酸、蛋白质、多糖等,其主要特征是由小分子的构件分子组成,具有比较复杂的空间结构,而且结构与生物活性密切相关。
酚抽提法:本法最初于1976年由Stafford及其同事提出,通过改良,以含EDTA、SDS及无DNA酶的RNA酶裂解缓冲液破碎细胞,经蛋白酶K处理后,用pH8.0的Tris饱和酚抽提DNA,重复抽提至一定纯度后,根据不同需要进行透析或沉淀处理获得所需的DNA样品。 凝胶过滤层析:凝胶过滤层析亦称凝胶色谱、排阻色谱或分子筛,是利用凝胶把分子大小不同的物质分离开的一种方法。凝胶色谱的机理是分子筛效应,在洗脱过程中,大分子不能进入凝胶内部,而沿凝胶颗粒间的空隙最先流出柱外;而小分子可以进入凝胶颗粒内部的多孔网状结构,路径长、流速慢,以至最后流出柱外。因此,混合样品如同“过筛”一样,因分子大小的不同得以彼此分开。
多重PCR:该技术是在一个反应体系中加入多对引物,同时扩增出多个核酸片段,由于每对引物扩增的片段长度不同,可用琼脂糖凝胶电泳或毛细管电泳等技术加以鉴别。
荧光域值:PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号。
荧光域值是3-15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍。 退火:在低温下,人工合成的两条寡聚核苷酸引物按碱基配对原则与单链目标DNA片段两侧特定部位互补结合,形成局部双链。 二、问答
1、根据作用原理生物分子的分离纯化有那几类?
答:(1)根据分子极性大小和溶解度的不同,如溶剂提取技术、盐析法、分配层析法、分级沉淀法等;
(2)根据分子形状和大小不同,如凝胶过滤层析等; (3)根据物质吸附性质不同,如选择性吸附与吸附层析法等; (4)根据分子带电性(电离性质)的差异,如离子交换层析、电泳、等电聚焦法等。
(5)根据配体特异性,如亲和层析。 2、什么原因易引起DNA降解,该如何解决?
答:原因:(1)材料不新鲜或反复冻融;(2)未很好抑制内源核酸酶的活性;(3)提取过程操作过于剧烈,DNA被机械打断;(4)外源核酸酶污染(5)反复冻融。
如何解决:(1)尽量取新鲜材料,低温保存材料避免反复冻融;(2)液氮研磨或匀浆组织后,应在解冻前加入裂解缓冲液;(3)在提取内源核酸酶含量丰富的材料的DNA时,可增加裂解液中螯合剂的含量;(4)细胞裂解后的后续操作应尽量轻柔(5)所有试剂用无菌水配制,耗材经高温灭菌;(6)将DNA分装保存于缓冲液中,避免反复冻融。
3、 简述PCR技术的基本原理
答:PCR技术的基本原理是DNA的半保留复制,在模板DNA、引物和四种dNTP存在的条件下,依赖于DNA聚合酶的酶促反应。在体内,DNA复制是周期性的,所以基因扩增的数量有限;PCR技术在体外利用人工合成的引物,再加上DNA聚合酶和一些合适的底物和因子,通过对温度的控制,使DNA不断位于变性、复性和合成的循环中,达到扩增DNA的目的。
4、 简述PCR实验中常见的问题及其对策。
答:(1)假阳性。对策:①PCR前后工序分室操作,试剂器材分室存放;②凡耐高温的试剂器材均高压灭菌;③Tip头、Eppendorf管等最好一次性使用;④操作人员必须戴手套进行操作;⑤试剂小量分装保存,用前先离心,防止开盖时液体溅出。
(2)非特异性产物。对策:①调换引物或降低引物用量;②TaqDNA聚合酶质量不好或用量偏高,应降低酶量或使用质量较好的酶;③可适当调节Mg2+的浓度;④提高退火温度,减少退火及延伸时间,或者采用二温循环PCR进行扩增;⑤适当增加模板用量,减少循环次数。 (3)假阴性。对策:①引物设计是否合理,有无二级结构形成,尤其是引物3’端应无发夹结构。②标本中是否有Taq酶抑制剂,Taq酶是否失活。③反应体系中是否有较难去除的蛋白质抑制PCR系统,用蛋白酶K重新处理常可获预期结果。④反应体系中有无蛋白酶或核酸酶降解DNA聚合酶或模板DNA,可在95℃以上加热10min使其灭活。⑤循环温度是否过高。⑥检测PCR产物的方法灵敏度不够。⑦靶序列
发生突变、缺失等。
(4)引物二聚体。对策:①两个相同的或不同的引物分子之间有较多的碱基配对。②引物比例太高,可增加模板用量。③退火温度过低。④热循环次数过多。
5、简述实时荧光定量PCR定量的基本原理?
答:该技术基于荧光能量传递技术,通过受体发色团之间偶极-偶极相互作用,能量从供体发色团转移到受体发色团,转移效率与两个发色团之间距离的6次幂倒数成比例,受体荧光染料发射出的荧光信号强度与DNA产量成正比,检查PCR过程的荧光信号便可知靶序列初始的浓度。
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